Utilize este identificador para referenciar este registo: https://hdl.handle.net/1822/23522

TítuloDevelopment and optimization of production and purification of the human protein BMP-2 in Escherichia coli for biomedical applications
Autor(es)Rodrigues, Alexandra Maria
Orientador(es)Domingues, Lucília
Gama, F. M.
Data2012
Resumo(s)Bone morphogenetic protein 2 (BMP-2) is one of the main representatives osteoinductive protein of a group of the transforming growth factor-β (TGF-β) superfamily of multifunctional cytokines. BMP-2 plays a critical role in cartilage and bone formation during skeletal development and repair. Several clinical studies have proven the clinical benefit of BMP-2 in the treatment of bone defects, being an effective alternative to bone grafts. Nowadays, BMP-2 is one of the two bone morphogenetic proteins approved as biological method to stimulate bone repair in humans. However, these commercial solutions are expensive, the protein purification is a laborious process and the obtained yields are low. A landmark occurred with the cloning of the human BMP-2 gene and its production by DNA recombinant technology. Production of recombinant human BMP- 2, using prokaryotic systems is the preferred method, being Escherichia coli one of the most popular systems for protein production. The bacterium E. coli is a well studied expression system, which provides a fast and economical production of recombinant proteins. Various studies on the production and purification of BMP-2 protein using E. coli as expression system have been reported; however BMP-2 is difficult to express in soluble form and its purification under native conditions remains a challenge. In this work, the soluble expression of the recombinant BMP-2 protein in E. coli was studied using the fusion protein technology, with the novel FH8 tag. The production of soluble recombinant fusion protein was initially achieved using as backbone the pQE-30FH8 vector, with the study of different culture conditions, in order to determine the conditions that maximize this soluble expression. Then, in order to increase soluble expression of FH8BMP-2, the cloning of bmp-2 gene was performed in two other different vectors: the pETMFH8 and pStaby1.2FH8, using different E. coli strains. Purification strategy of FH8BMP-2 was performed by the following chromatography techniques: using the FH8 as purification tag by hydrophobic interaction (HIC); affinity chromatography with nickel (using the His tag as purification tag) and ion exchange. The results presented in this work showed that recombinant fusion protein was successfully soluble expressed in the three vectors used. The pETM system was the one that showed the highest soluble expression. In relation to purification, the FH8-HIC technique, when combined with calcium addition to soluble fraction, shows good results in purification profile of target protein and a high yield of purified protein. Calcium ions and the own conformation of FH8 can have an important role on the aggregation of FH8BMP-2 into a dimer. Overall, the BMP-2 was efficiently expressed in E. coli as a soluble protein and an optimized purification strategy was developed to obtain this bone morphogenetic protein under native conditions. This work may be important for further steps for an in vitro production and biomedical application of recombinant BMP-2 protein.
A proteína morfogenética do osso tipo 2 (BMP-2) é uma das proteínas osteoindutoras mais representativas da superfamília do fator de transformação do crescimento β (TGF-β) que agrupa um conjunto de citoquinas multifuncionais. A proteína BMP-2 desempenha um papel crítico na formação e regeneração do osso e cartilagem, durante o desenvolvimento do esqueleto. Vários estudos clínicos têm demonstrado o benefício clínico da BMP-2 no tratamento de defeitos ósseos, sendo uma alternativa eficaz aos enxertos do osso. Atualmente, a BMP-2 é uma das duas proteínas morfogenéticas do osso que se encontra aprovada como método biológico para estimular a reparação óssea em seres humanos. No entanto, estas soluções comerciais são dispendiosas, a purificação da proteína é um processo laborioso e os rendimentos obtidos são baixos. Um marco importante ocorreu com a clonagem do gene humano da proteína BMP-2 e a sua produção através da tecnologia de DNA recombinante. A produção desta proteína humana recombinante, utilizando os sistemas procarióticos é o método preferido, sendo a bactéria Escherichia coli um dos sistemas mais populares de produção proteica. A bactéria E. coli é um sistema de expressão bem estudado, que proporciona uma produção rápida e económica de proteínas recombinantes de interesse. Vários estudos têm reportado a produção e purificação da proteína BMP-2, usando como sistema de expressão a E. coli; contudo, a proteína BMP-2 é difícil de expressar na forma solúvel e sua purificação em condições nativas continua a ser um desafio. Neste trabalho, a expressão solúvel da proteína BMP-2 recombinante em E.coli foi estudada através da tecnologia de proteínas de fusão, com o novo tag de fusão FH8. A produção solúvel da proteína de fusão recombinante foi conseguida usando como vetor inicial o pQE-30FH8, com o estudo das diferentes condições de cultura, com o objetivo de determinar as condições que maximizam essa expressão solúvel. Em seguida, com a finalidade de aumentar a expressão solúvel da FH8BMP-2, foi realizada a clonagem do gene da BMP-2 em dois vetores diferentes: o pETMFH8 e pStaby1.2FH8, usando diferentes estirpes de E. coli. A estratégia de purificação da proteína FH8BMP-2 envolveu a realização das seguintes técnicas de cromatografia: interação hidrofóbica (HIC), usando o tag FH8 como tag de purificação; cromatografia de afinidade com níquel (usando o His tag como tag de purificação) e troca iónica. Os resultados apresentados neste trabalho mostraram que a proteína de fusão recombinante foi expressa solúvel com sucesso nos três vetores utilizados. O sistema pETM foi aquele que apresentou um maior nível de expressão solúvel. Em relação à purificação, a técnica de FH8-HIC, quando combinada com a adição de cálcio à fração solúvel, apresenta bons resultados em relação ao perfil de purificação da proteína alvo e um elevado rendimento de proteína purificada foi obtido. Os iões de cálcio e a própria conformação do tag FH8 podem ter um importante papel na agregação da FH8BMP-2 na forma dimérica. Em geral, a BMP-2 foi eficientemente expressa no sistema E. coli como proteína solúvel e uma estratégia de purificação otimizada foi delineada para obter esta proteína morfogenética do osso em condições nativas. Este trabalho pode ser importante para novas etapas de uma produção in vitro e aplicação biomédica da proteína BMP-2 recombinante.
TipoDissertação de mestrado
DescriçãoDissertação de mestrado em Biomedical Engineering
URIhttps://hdl.handle.net/1822/23522
AcessoAcesso aberto
Aparece nas coleções:BUM - Dissertações de Mestrado
CEB - Dissertações de Mestrado / MSc Dissertations

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